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互作實(shí)驗(yàn)蛋白實(shí)驗(yàn)分子細(xì)胞實(shí)驗(yàn)
RNA結(jié)合蛋白免疫沉淀(RIP)實(shí)驗(yàn):原理、詳細(xì)步驟及結(jié)果解讀完整指南

RNA結(jié)合蛋白(RNA binding protein,RBP)是一類功能強(qiáng)大而廣泛的調(diào)節(jié)因子,約占細(xì)胞編碼的所有蛋白的5%~10%。目前除了少數(shù)RNA以核酶形式單獨(dú)發(fā)揮功能,大部分RNA通過與蛋白結(jié)合形成RNA-蛋白復(fù)合物來發(fā)揮作用。

RIP(RNA Binding Protein Immunoprecipitation,RNA結(jié)合蛋白免疫沉淀)是在傳統(tǒng)IP實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上衍生出的應(yīng)用,核心用于研究體內(nèi)RNA與蛋白的結(jié)合情況。其原理是基于抗體特異性識(shí)別目標(biāo)蛋白,從而將與蛋白結(jié)合的RNA復(fù)合物沉淀下來。

目前,RIP技術(shù)主要有兩大方向:一是明確特定蛋白與RNA之間的結(jié)合對(duì)應(yīng)關(guān)系;二是結(jié)合高通量測(cè)序技術(shù),篩選出RBP所調(diào)控靶基因。



  RIP實(shí)驗(yàn)原理  


樣本裂解液與結(jié)合了抗體的磁珠或樹脂(Beads)進(jìn)行孵育,通過”抗原-抗體“之間的免疫作用,將“抗體-誘餌蛋白-互作RNA”一起“共沉淀”到Beads上。

洗掉未結(jié)合的RNA后,再將“誘餌蛋白-互作RNA”從Beads洗脫下來,提取洗脫液中的RNA,之后可以用qPCR檢測(cè)已知RNA,也可以用二代測(cè)序檢測(cè)未知RNA。

RIP實(shí)驗(yàn)原理-輝駿生物RIP實(shí)驗(yàn)到投稿

圖1 RIP實(shí)驗(yàn)原理圖



  RIP實(shí)驗(yàn)步驟  


RIP實(shí)驗(yàn)大致流程:樣本裂解→Input樣品制備→樣本裂解液與抗體孵育(抗原抗體結(jié)合)→proteinA/G磁珠與抗體結(jié)合→RNA免疫共沉淀(RIP)→復(fù)合物洗脫→RNA提取→qPCR或測(cè)序分析


RIP實(shí)驗(yàn)步驟圖.jpg
圖2 RIP實(shí)驗(yàn)步驟圖


1 細(xì)胞收集

(1)每組細(xì)胞收集1-2*10e7個(gè),棄培養(yǎng)基;

(2)用預(yù)冷的PBS清洗細(xì)胞2-3次,徹底去除培養(yǎng)基成分;

2 細(xì)胞裂解

(1)加入0.6-1mL預(yù)冷的裂解緩沖液(輝駿貨號(hào):FI8101),在裂解液中預(yù)先加入6-10μL蛋白酶抑制劑(輝駿貨號(hào):FI8105、3-5μL RNA酶抑制劑(輝駿貨號(hào):FI8106),現(xiàn)用現(xiàn)配;

(2)為了更充分裂解,最好冰上超聲至溶液基本澄清;如果無超聲條件,可置于冰上裂解30min,期間每10 min渦旋混勻一次,每次5s;

(3)4℃ 12000 rpm離心15 min,收集上清至新的無RNase的1.5 mL EP管中。

3 Input樣本制備

(1)取30 μL作為蛋白 input,取30 μL作為RNA input;

(2)剩余上清平分為兩份用于RIP實(shí)驗(yàn)(記為實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組),置于冰上備用或-80℃保存。


 RIP實(shí)驗(yàn)分組流程圖.jpg
圖3 RIP實(shí)驗(yàn)分組流程圖

4 磁珠預(yù)處理
(1)渦旋混勻proteinA/G磁珠(輝駿貨號(hào):FI8302),按照每組40 μL的用量取出混勻好的磁珠;

(2)每組加入200 μL漂洗液(輝駿貨號(hào):FI8107),顛倒混勻30次,放磁力架上靜置1 min ,并棄上清;

(3)重復(fù)上步操作一次。

5 樣本裂解液與抗體孵育

(1)向樣本裂解液中加入誘餌蛋白抗體或Normal IgG,放混勻儀上室溫孵育1-2 h(或4℃過夜孵育以提高靈敏度);

(2)洗滌2次去除未結(jié)合抗體(使用漂洗緩沖液)。

6 protein A/G磁珠與抗體結(jié)合

(1)向protein A/G磁珠中加入的樣本-抗體混合物,放混勻儀上4℃孵育2 h;

(2)放磁力架上靜置 1 min 并棄上清;

(3)每組加入500 μL漂洗液,顛倒混勻30次,放磁力架上靜置1 min,后棄上清;

(4)重復(fù)上步操作一次;

(5)再次加入500 μL漂洗液,顛倒混勻30次;

(6)取100 μL移入新離心管中用于蛋白檢測(cè)(標(biāo)注為管1),剩余400 μL用于RNA提取(標(biāo)注為管2),兩管分別放磁力架上靜置1 min 并棄上清,保留磁珠。

7 蛋白Input和誘餌蛋白檢測(cè)

(1)向蛋白Input組、管1的磁珠中加入1×SDS-PAGE上樣緩沖液,95℃加熱5-10 min;

(2)管1放磁力架上靜置1 min,收集上清至新的離心管中,Western Blot檢測(cè)誘餌蛋白的表達(dá)情況,驗(yàn)證是否IP成功。

8 RNA提取純化

方案1——試劑盒提取RNA,可按照微量RNA提取試劑盒來提取RNA。

方案2——Trizol法提取RNA

(1)向管2的磁珠中加入1 mL Trizol,室溫靜置5 min;4℃ 12000 g 離心10 min,取上清;

(2)加入0.2 mL氯仿,渦旋混勻或猛烈晃動(dòng)15 s,室溫放置2~3 min;

(3)4℃ 12000 g離心15 min,吸取水相至新的無RNase1.5 mL EP管中(約可吸取0.5-0.55 mL);

(4)加入0.5 mL異丙醇,顛倒數(shù)次混勻,室溫下沉淀10 min或-20℃沉淀過夜;

(5)4℃ 12000 g離心 10 min,管底可見RNA沉淀,棄上清;

(6)加入1 mL 75%乙醇(DEPC水或RNase-free水配制);

(7)4℃ 12000 g離心10 min,棄上清;5000 g快速離心1 s,小心吸盡液體;

(8)待RNA略干后(靜置3 min),加入20 μL DEPC水或RNase-free水,將RNA洗脫下來,-80℃保存或直接進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。

注意:①選擇方案1(先洗脫再提取RNA),可能損失部分RNA;②如果RNA含量低,建議選擇方案2(從磁珠上直接提取RNA),提取效率更高,但可能會(huì)增加非特異性。

9 RNA分析

提取后的RNA、RNA input可用于qPCR實(shí)驗(yàn)或高通量測(cè)序。

RIP實(shí)驗(yàn)RNA檢測(cè)圖.jpg
圖4 RIP實(shí)驗(yàn)RNA檢測(cè)圖



  RIP實(shí)驗(yàn)步驟注意事項(xiàng)  


1、在實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)中,需要有蛋白input組、RNA input組、誘餌蛋白抗體RIP組(實(shí)驗(yàn)組)和IgG抗體陰性對(duì)照組(對(duì)照組)。

2、全程保持無酶,使用不含RNase的儀器、吸頭和試管,裂解緩沖液和漂洗液中添加RNase抑制劑,防止RNA降解。

3、提取的RNA需無明顯降解(瓊脂糖電泳可見清晰的28S、18S rRNA條帶),且純度達(dá)標(biāo)OD260/280≈1.8-2.0),否則會(huì)影響后續(xù)檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確性。

4、RIP后的RNA一般較微量,操作時(shí)注意勿把RNA沉淀吸走。

5、切勿讓RNA過分干燥,否則將極難溶解,且測(cè)出的A260/A280值會(huì)低于1.6。



  RIP實(shí)驗(yàn)結(jié)果解讀  


1 誘餌蛋白檢測(cè)結(jié)果

Input組:利用Anti-Bait對(duì)樣本裂解液進(jìn)行WB檢測(cè),驗(yàn)證Input中是否存在Bait,從而確定蛋白的表達(dá)情況以及抗體效果;

IgG組(陰性對(duì)照組):排除非特異性結(jié)合的干擾,normal IgG不能富集Bait,一般不會(huì)有Bait條帶,如果有條帶說明Bait與beads或IgG有非特異性結(jié)合,需要重新完善下方法;

IP組(實(shí)驗(yàn)組):Anti-Bait可以特異性富集Bait,所以一定會(huì)有Bait條帶,沒有條帶說明IP實(shí)驗(yàn)失敗,需要復(fù)核IP流程,或檢查Anti-Bait是否可以用于IP實(shí)驗(yàn)。

誘餌蛋白Western blot檢測(cè)結(jié)果圖.jpg
圖5 誘餌蛋白Western blot檢測(cè)結(jié)果圖(驗(yàn)證是否IP成功)


2 待測(cè)基因檢測(cè)結(jié)果

(1)qPCR檢測(cè)(已知目標(biāo)RNA)

Input組:實(shí)驗(yàn)起始的樣本裂解液,用來校正RNA初始量差異,作為基礎(chǔ)參照;

IgG組(對(duì)照組):normal IgG的RIP產(chǎn)物,用于排除非特異結(jié)合RNA的干擾,驗(yàn)證結(jié)果特異性;

Anti-Bait組(實(shí)驗(yàn)組):誘餌蛋白抗體的RIP產(chǎn)物,捕獲與誘餌蛋白結(jié)合的RNA,用于目標(biāo)檢測(cè)。

計(jì)算公式:

①計(jì)算百分比Input 

%Input=2(-ΔCt[normalized ChIP])x100% 

②與陰性對(duì)照比較計(jì)算Fold Enrichment(倍數(shù)富集)

ΔΔCt[ChIP/陰性]=ΔCt[normalized ChIP] - ΔCt[normalized 陰性]

Fold Enrichment = 2^(-ΔΔCt[ChIP/陰性])

RIP組相對(duì)于IgG組的富集圖.jpg
圖6 RIP組相對(duì)于IgG組的富集圖

上圖為RIP陽性結(jié)果示意圖:表明誘餌蛋白可以與獵物RNA特異性結(jié)合,存在相互作用。


(2)高通量測(cè)序(RIP-seq,發(fā)現(xiàn)未知結(jié)合RNA)

結(jié)果判斷:測(cè)序產(chǎn)生的原始數(shù)據(jù)(raw data)通過質(zhì)量控制以及過濾,UMI解析和去重、糾錯(cuò),獲得高質(zhì)量的測(cè)序數(shù)據(jù)(即clean data)。借助比對(duì)工具與研究物種的參考基因組進(jìn)行比對(duì),比對(duì)上的序列用于后續(xù)的生物信息學(xué)分析(包括read的分布和peak分析)。在全基因組范圍對(duì)peak進(jìn)行掃描,對(duì)掃描到的peak進(jìn)行基因注釋,GO、KEGG Pathway富集分析以及motif分析,深入解析RNA結(jié)合蛋白(RBP)的調(diào)控機(jī)制。



  RIP實(shí)驗(yàn)*輝駿服務(wù)  

1 RIP試劑盒
 產(chǎn)品名稱
 貨號(hào)
 Protein A/G RIP試劑盒
 FI8709
 Protein G RIP試劑盒
 FI8703
 ChainFree? Flag-Tag RIP試劑盒
 FI8704


2 RIP實(shí)驗(yàn)服務(wù)
 服務(wù)項(xiàng)目
 服務(wù)內(nèi)容
 RIP qPCR(驗(yàn)證型)
 RIP調(diào)取誘餌蛋白、qPCR檢測(cè)IP產(chǎn)物中待驗(yàn)證的RNA
 RIP seq(篩選型)
 RIP調(diào)取誘餌蛋白、qPCR檢測(cè)IP產(chǎn)物中待驗(yàn)證的RNA、Seq檢測(cè)與分析


如果您在做RIP實(shí)驗(yàn)上還有疑問,歡迎咨詢我們的技術(shù)人員。輝駿生物還提供各種類型蛋白互作試劑盒以及互作實(shí)驗(yàn)服務(wù)(RIP、RNA pull down、Chip、DNA pull down、IP實(shí)驗(yàn)),可根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求定進(jìn)行選擇,助力您的科研更高效、更精準(zhǔn)!

標(biāo)簽:circRNA  circRNA翻譯蛋白  翻譯蛋白  mRNA  

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